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肠类器官的培养及应用2021-11-01 08:56:42

肠道上皮由隐窝-绒毛基本单位构成,肠道干细胞位于隐窝底部,其快速分裂增殖产生过渡扩增细胞。TA细胞沿着隐窝向上迁移并生长至绒毛两侧,同时伴随着增殖分化,最终形成成熟且完全分化的肠功能细胞,包括肠上皮吸收细胞、潘氏细胞、杯状细胞、内分泌细胞等。2009年,研究者首次利用小鼠 Lgr5+干细胞在体外培养出3D小肠绒毛状上皮空心球体结构,将整个隐窝结构或单 Lgr5+ 干细胞种植到基质胶中,然后利用无血清培养基进行培养,培养基中包含3种必需因子:分泌蛋白、表皮生长因子(EGF)和 头 蛋 白。在结肠和人类肠类器官培养中,Wnt蛋白和其他物质(如转化生长因子β(TGF-β)抑 制剂、p38抑制剂、烟酰胺等)被添加,这基本阻止了培养中干细胞的分化,导致细胞类型多样性降低。

随着肠类器官培养技术的成熟,肠类器官已被广泛应用于各种领域,包括疾病建模、治疗药物和方案的开发、宿主和微生物的相互作用、生物分子传递和肠道生物学功能开发等。同时,肠道类器官疾病模型提供了一个可用于研究药物开发、药物毒性、生物利用度和组织反应的生理学相关系统。Spence等从人诱导多能干 细 胞(hiPSC)中生成肠类器官,这 些 类器官也称为人肠类器官(HIOs)或诱 导人 肠 类 器 官(iHIOs)。
 
三维的HIOs由极化的柱状上皮细胞组成,该上皮细胞形成绒毛样结构和表达肠干细胞标记的隐窝样增生区。使用该培养系统模型发现人类肠道干细胞在发育过程中从头形成。在人类和小鼠中,19个Wnt基因编码进化上保守的分泌型Wnt脂糖蛋白,控制多种细胞过程,包括干细胞的维持、增殖、迁移和极性。Wnt诱导的信号通路分为2个主要分支,分别是β-连环素依赖性途径和β-连环素非依赖性途径。Tsai等揭示了调节肠类器官区域特异性的机制,在不同环境条件下证明了暴露于活跃的成纤维细胞生长因子和 Wnt信号 的持续时间控制着区域特性。
 
此外,短期暴露于FGF4和CHIR99021(一 种稳定β-连环蛋白的GSK3抑制剂)导致肠类器官的基因表达模式类似于发育中的人十二指肠,而长期暴露则导致肠类器官类似于回肠,该方法成功开发了区域特异性的hESC来源的肠类器官。Jardé等首次发现了一种神经调节蛋白-1,该蛋白是一个关键的表皮生长因子家族配体,通过促进干细胞再生受损组织来增强肠道内壁的修复。
 
已知体外培养需要特定的成分来模拟体内环境。近期报道了发展微型图像与适当的ECM和胶原蛋白支架生成一个体外自我更新人类小肠上皮细胞,复制了体内小肠的关键特性,这种结合微工程支架、生物物理线索和化学梯度控制体外肠道上皮的新方法,可以作为一种与人体小肠上皮生理相关的模拟物,广泛适用于其他依赖梯度进行生理功能建模的组织。另外,已有研究者将胶原蛋白成功地用作基质凝胶的ECM替代品,可在体外和体内用于各种肠道类器官的扩张和分化。总之,生物材料基质进入类器官培养系统促进了细胞-ECM和细胞-细胞相互作用的受控研究。
 
出自《类器官的研究进展及应用》作者李娟娟,张君涛,赵英博。
 

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