hiPSC向肠道类器官的分化培养流程2026-05-11 09:12:23
将hiPSC种在涂覆有Matrigel基质胶的6孔板上,待细胞长满,以1∶6的比例将细胞从6孔培养板传入基质胶包被的24孔培养板中。在PGM1人多潜能干细胞培养基中加入Y27632(10μmol/L)化合物,诱导处理24h,并允许细胞持续生长直至达到80%-95%汇合度。在RPMIMedium1640basic(1×)培养基中加入ActivinA(100ng/ml)、GlutaMAXTM(1×)补充剂、青-链霉素(1×)、CHIR99021(3μmol/L)和FGF2(2.5ng/ml)制备定形内胚层(DE)培养基,使用DE培养基继续培养细胞3d,每天更换新鲜培养基。DE培养结束以后,在AdvancedDMEMF12培养基中补充FGF4(500ng/ml)和CHIR99021(3μmol/L)制备中肠/后肠分化培养基。将内胚层细胞在中肠/后肠分化培养基中诱导4d。每天添加新鲜培养基。MH阶段培养结束以后,收集漂浮球状体包埋于Matrigel基质胶中,并在含R-spondin-1(500ng/ml)、Noggin(100ng/ml)和EGF(100ng/ml)的HIOs培养基中培养,直至成熟。
获得培养成熟的人源肠道类器官后,将人源肠道类器官分为正常对照组和模型组。正常对照组用正常培养基培养。模型组使用5-FU进行干预,分别应用5-FU1.0、2.0和4.0μg/ml作用于类器官12、24和36h,并比较不同浓度和不同干预时间类器官的免疫荧光染色和qRT-PCR分析,选择合适的干预浓度和时间建立5-FU人源肠道类器官损伤模型。肠道类器官固定后,石蜡包埋切片。切片在环保型透明脱蜡液中脱蜡2次,每次20min。在梯度酒精(无水乙醇、95%乙醇、75%乙醇)中水化,每个梯度酒精10min。PBS清洗2次,每次5min。
出自《5-氟尿嘧啶致人源肠道类器官损伤的研究》作者方佳瑞,李晓彤,朱恒。
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